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我将930bp的insert放入47xx bp的vector ligation的产物有放进comptent cell筛选抽出plasmid 後来切一刀跑胶看大小比6000少一点,符合预期 也有跑切了一刀的空vector 分子量比5000少一点,也符合预期 用pcr检查insert不成功有许多杂band,还在重新尝试 这个clone的产物我是要接着做bac to bac的实验,将新plasmid放进DH10bac的comptent cell上,使我的insert被Tn7夹进bacmid中,完成病毒DNA 问题是我放新vector进去後,涂盘都不会长菌,我连蓝白筛的步骤都到不了 加入plasmid後有摇SOC medium,菌没死 代表我的菌可能没有吃进plasmid,或者就是吃进去没有发生重组,那这就代表我的plasm id基因是错的所以不会重组 也有做空的vector,就有长出蓝白的菌株 代表空的vector没问题,菌也没问题 怀疑transform没进去,还尝试两次heat shock,菌也没死,但涂盘还是不会长 後来怀疑有重组的菌太少,摇5ml的菌 o/n,然後低速离心,抽取部分上清液,用较浓的菌液涂盘,一样什麽都没长 结论是我有做空vector的ctrl,表示手法跟comptent cell跟vector本身是没问题的,但 我vector跟insert做clone之後就坏了 但是奇怪的是我的clone产物大小正确,也能用通过抗生素筛选,就算我insert出问题,v ector还是原来的DNA序列,重组也应该要发生,做DH10bac的comptent cell也应该要长出 菌 请问各位大大ligation有可能做出产物但DNA序列 mutant掉吗 --



※ 发信站: 批踢踢实业坊(ptt.cc), 来自: 111.82.44.202
※ 文章网址: https://webptt.com/cn.aspx?n=bbs/Biotech/M.1453535589.A.523.html
1F:→ Ice9: 抽了 plasmid 之後有做定序吗? 01/24 11:54
定序结果不理想,讯号杂乱,厂商再次尝试之後表示无法成功定序 但抽出的质体明明很纯,浓度也还OK有500ng/ul,我用insert的primer跟vector上的primer 都定不太好...囧,感觉我的vector变了
2F:→ IMR32: 如果你是用传统方法,用ligase以blunt end的方式黏进去 01/25 13:14
3F:→ IMR32: 必须考虑合成的primer,5端无phospho group,必须kinase 01/25 13:15
4F:→ IMR32: 处理过 01/25 13:15
5F:→ IMR32: 另外,如同一楼,因为你只切一刀,还是以定序为准 01/25 13:16
我们当初有考虑blunt end会有太多副产物,所以用sticky end来接合 实验结果是确定接出东西,大小符合,且含有抗生素耐性,也和空vector切一刀比对 排除了vector自接的假讯号 所以尽管定序方面不理想,老板也认为接出来了,才叫我接着做
6F:→ qasasasq: 这个实验我做过如果有拿到正确的质体,我在heat shock後 01/26 10:09
7F:→ qasasasq: 会放进37度的培养箱内4~5小时培养,促进Tn7帮助质体上的 01/26 10:11
8F:→ qasasasq: insert进入bacmid中 01/26 10:12
9F:→ qasasasq: 我硕班是学这个,有问题可以寄信给我 01/26 10:13
Protocol是说heat shock之後用SOC培养4小时,然後第一次失败了之後我们培养6小时,部分涂盘 剩下的再加SOC继续放大,浓缩之後再次涂盘,最後不管摇4小时还是6小时,或者之後放大的浓菌 都无法长出任何菌株,有怀疑我置盘跟过程有出错,但用空vector做ctrl一次就成功 ※ 编辑: s992003 (140.128.123.73), 01/26/2016 15:43:08
10F:推 jabari: b2b很赌运气的 不过比b2blue好 01/26 15:29
※ 编辑: s992003 (140.128.123.73), 01/26/2016 17:15:13
11F:→ qasasasq: 你的培养盘上应该含有三种抗生素,理论上heat shock成功 01/27 09:06
12F:→ qasasasq: 不管insert有没有插入bacmid内都应该会长出菌,空载体在 01/27 09:09
13F:→ qasasasq: 那个环境下是无法长出菌来 01/27 09:10
有三种抗生素,我看原文protocol的工作原理,应该是pFastbac1这个vector上的T7会夹一段 基因进去bacmid中,而原先pFastbac抗gentamicin的基因序列是反着的,无法抗gentamicin,但是夹入bacmid之後才能正常表达抗gentamicin的基因 原文protocol是说空的pFastbac1 vector在transform进去DH10bac之後,透过T7将一段DNA 夹进去(包含抗gentamicin基因),此时重组完的bacmid才能抗gentamicin,内容提到这是一 个positive control,因为我的vector跟原来vector相比就是多一段我外加的insert而已 具有抗生素耐性的基因还是在vector本身吧,所以空的vector应该要长?因为有转入抗 gentamicin的基因,而且基因表达方向正确? ※ 编辑: s992003 (140.128.123.73), 01/27/2016 16:32:16 ※ 编辑: s992003 (140.128.123.73), 01/27/2016 16:35:04
14F:→ Ice9: 定序没结果,那有再用PCR确认吗?可以混用insert和vector上 01/27 20:00
15F:→ Ice9: 的Primers搭配,另外再寻找其他适合切位做进一步确认。只切 01/27 20:00
16F:→ Ice9: 一刀,而且是用vector上原有的切位,并不足以说明什麽。应该 01/27 20:02
17F:→ Ice9: 再行确认你的序列完全没问题再做下去。赌人品这种事,在科学 01/27 20:02
18F:→ Ice9: 实验上经常会得到负值。 01/27 20:03
19F:→ Ice9: 这家不行换别家,primers可以再订新的或确认其他因子没问题. 01/27 20:05
定序做了一些尝试都不太行,不是没讯号就是讯号杂乱,无论从insert端还是vector上, 切一刀的用意不是确定切位,是想让vector呈线性然後就可以看到正确的分子量大小,因为 supercoil很难看出正确大小 但小弟现在比较不解的是,好就算我放进去的insert是错的,但我的产物跟原始vector一样 能抵抗amp,所以vector的序列应该没错才对,就只是在切点中插入一段未知的序列,它该有 的vector功能还是应该要存在 毕竟我就是拿那个纯的vector切两刀然後纯化在去跟切两刀的insert进行ligation, 就算我做成vector自接,它也是要具备vector的功能,能转入bacmid中才对 奇怪的是我就从那个胶切出来怎麽会跑出一个分子量一样大的vector然後能跟原来vector 一样能抗其中一种抗生素,但其他部分的基因好像完全不一样似的,这假讯号也太巧了吧.. 除非接进去的insert上的基因能表达出一些东西破坏其他基因的正常表现... 其实insert在接进去前有定序一次,正确无误就是了
20F:推 jabari: b2b需要同源重组啦 养菌的timing很难抓 有时候放久一点会 01/28 05:34
21F:→ jabari: 中 有时候放久会变弱势 碰运气吧 01/28 05:34
22F:推 jabari: 再来就是你的DH10bac是自己再作的还是买i牌贵松松的 那只 01/28 05:38
23F:→ jabari: 自制的效果很不好 01/28 05:38
是用i牌贵松松的,所以前面两三次没做出来,老板就叫我不要做太多尝试,先找出错的地方 但用没接进insert的vector一次就成功...如果接进insert也才多900多bp,转入bacmid的 效率应该不会因为这900多bp而差太多吧
24F:→ qasasasq: gentamicin 只是确认自己的质体是否有成功进入DH10bac 01/28 09:25
25F:→ qasasasq: 本身DH10bac就应该有Kanamycin和tetracyclin抗生素耐性 01/28 09:28
26F:→ qasasasq: 所以当质体有进去DH10bac中时,有没有进行基因的转移都 01/28 09:30
27F:→ qasasasq: 具有三种抗生素的抗性,判断基因是否插入bacmid中用蓝白 01/28 09:32
28F:→ qasasasq: 筛来做判定 01/28 09:33
※ 编辑: s992003 (140.128.123.73), 01/28/2016 16:09:41
29F:推 jabari: 嗯... 看来只能试了 0.,0 DH10bac超贵的 我都减量try 02/01 20:51
30F:→ VincentYan: 定序的总量200-300 ng就可以,你的plasmid浓度500 ng/ 06/06 16:27
31F:→ VincentYan: uL太高了... 06/06 16:27







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